理研や阪大など、連続フェムト秒結晶構造解析のための結晶供給手法を開発

連続フェムト秒結晶構造解析のための結晶供給手法を開発
−少量の試料で多様なタンパク質の結晶構造決定がSACLAで可能に−


＜ポイント＞
　・高粘度物質のグリースを用いて、結晶供給を制御した世界初の手法
　・従来の１／１０〜１／１００の試料でタンパク質の三次元結晶構造解析が可能
　・タンパク質結晶だけでなく有機、無機物質にも応用できる


＜要旨＞
　理化学研究所（理研、野依良治理事長）、大阪大学（平野俊夫総長）、京都大学（山極壽一総長）、高輝度光科学研究センター（JASRI、土肥義治理事長）は、X線自由電子レーザー（XFEL）施設「SACLA［１］」のX線レーザーを用いた「連続フェムト秒結晶構造解析（SFX）［２］」のための汎用的タンパク質結晶供給手法の開発に成功しました。これは、理研放射光科学総合研究センター（石川哲也センター長）生物試料基盤グループの菅原道泰研究員、SACLA利用技術開拓グループの南後恵理子研究員、岩田想グループディレクター（京都大学大学院医学研究科　教授）、大阪大学大学院工学研究科の溝端栄一助教、同大学蛋白質研究所の鈴木守准教授、京都大学大学院農学研究科の桝田哲哉助教、医学研究科の島村達郎特定講師、薬学研究科の潘東青　元研究員、JASRI・XFEL研究推進室の登野健介副主幹研究員らを中心とした共同研究グループの成果です。

　SACLAのX線レーザーを用いた連続フェムト秒（１フェムト秒は１，０００兆分の１秒）のX線結晶構造解析が実現すれば、これまで課題だった試料の放射線損傷［３］が起こることなく、ナノメートル〜マイクロメートル（nm〜μm）サイズのタンパク質の微小結晶でも結晶構造を決定できます。さらに、SFXでは酵素反応に伴う一連の構造変化が起きるフェムト秒〜ピコ秒（１ピコ秒は１兆分の１秒）間の反応過程などを観察できます。しかし、タンパク質結晶を連続的にX線レーザーの照射ポイントに供給するには液状の試料を速い流速で噴射するため、結果として大量の試料が必要であること、また、試料の組成によっては実験中に塩結晶が析出するため、タンパク質結晶の安定供給ができないという問題がありました。

　共同研究グループは、タンパク質結晶を高粘度物質のグリース［４］に混ぜることで低速で試料を押し出し、少量の試料でさまざまなタンパク質の回折実験が行える手法の開発に成功しました。必要な試料が１mg以下と従来の１／１０〜１／１００程度であり、試料タンパク質が少量でも三次元結晶構造の決定が可能になります。今後、タンパク質に限らず、有機、無機物質といった幅広い研究分野への応用が期待できます。

　本研究は、文部科学省　X線自由電子レーザー重点戦略課題「創薬ターゲット蛋白質の迅速構造解析法の開発」（研究代表者：岩田想）、科学技術振興機構　戦略的創造研究推進事業（研究加速およびERATO）などの支援を受けて実施され、成果は米国の科学雑誌『Nature　Methods』に掲載されるに先立ちオンライン版（１１月１０日付け：日本時間１１月１１日）に掲載されます。


＜背景＞
　原子分解能でタンパク質の三次元結晶構造を決定するには、タンパク質結晶を用いたX線結晶構造解析が適しています。大型放射光施設「SPring−８［５］」の放射光［６］を用いる場合、一般に約３０マイクロメートル（μm）以上のタンパク質結晶が必要です。しかし、３０μm以上のタンパク質結晶を得るのは困難で、特に創薬などの研究用途で重要なヒトを含む動物由来のタンパク質は、結晶化に使用できる十分な量を得るのが難しく、析出する結晶も回折実験に適した十分なサイズに成長しません。また、実験中にタンパク質結晶が放射線損傷を起こすことも大きな問題でした。

　X線自由電子レーザー（XFEL：X−ray　Free−Electron　Laser）は、SPring−８の放射光より１０億倍も明るいため、ナノメートル〜マイクロメートル（nm〜μm）サイズのタンパク質の微小結晶でも構造解析ができます。現在、稼働中のXFEL施設は、理研の「SACLA」と米国のSLAC国立加速器研究所の「LCLS（Linac　Coherent　Light　Source）」があり、また世界各国でXFEL施設の建設計画が進行中です。

　SACLAの１０フェムト秒という超短時間でのX線レーザーの照射により、タンパク質が壊れる前に微結晶の回折イメージを検出できます。このXFELの特性を利用した主なタンパク質の構造決定法として、連続フェムト秒結晶構造解析（SFX：Serial　Femtosecond　Crystallography）が注目されています（図１a）。SFXでは、主にジェットインジェクターと呼ばれる装置から噴出した多数の微小結晶を含む液体にX線レーザーを照射し、各結晶からの回折データを連続的に収集します。SFXは常温で実験を行えるため、従来の低温条件下（１００K程度）で行う回折実験とは異なり、生理条件（生体内）に近い構造を得ることができます。

　しかし、タンパク質結晶を連続的にX線レーザーの照射ポイントに供給するには、大量の試料が必要であること、試料の組成によっては実験中に塩結晶が析出することが問題でした。


＜研究手法と成果＞
　生体膜を構成している膜タンパク質［７］に対してSFXを行う場合、主に脂質キュービック相（LCP：Lipidic　Cubic　Phase）法［８］と呼ばれる結晶化が用いられます。LCPの高粘度環境下にあるタンパク質結晶をそのままLCPインジェクターからゆっくり押し出すことで、非常に少量の試料でデータを収集できます。しかし、全てのタンパク質結晶をLCP法で得るのは困難であり、LCP法以外の結晶化法から得た結晶でも簡単に測定できる手法の開発が望まれていました。

　そこで共同研究グループは、高粘度物質と微小結晶を混ぜ合わせることで、結晶をX線レーザーの照射ポイントに安定して供給できる手法を検討しました。その高粘度物質に必要とされる条件として、（１）タンパク質結晶と混合しても結晶に損傷を与えない物質（２）高濃度の塩や高粘度の試薬を含む微小結晶溶液と混合してもインジェクターから安定に試料を流せる（３）高粘度物質由来のノイズの発生が少なく、かつ高粘度物質内で微結晶が凝集せず均一に分散してノズルの目詰まりを起こさないことなどが求められます。

　共同研究グループは、それらの条件を満たす高粘度物質を検討した結果、タンパク質結晶のキャリア媒体として「グリース」が利用できることが分かりました。これをインジェクターに充填して測定する方法（グリースマトリックス法）を開発しました（図１b）。今回、リゾチーム、グルコースイソメラーゼ、ソーマチン、および脂肪酸結合タンパク質（FABP３）の４種類の水溶性タンパク質の結晶（約７〜３０μm）から、結晶構造の評価に十分な回折分解能２オングストローム（Å：１Åは１００億分の１m）以上の回折データの収集に成功し、結晶構造を決定しました。一例としてリゾチームの結晶構造を図２に示します。SFX実験で使用した各試料タンパク質は１mg以下であり、従来の方法に比べ１／１０〜１／１００の少量化に成功しました。


＜今後の期待＞
　SACLAの１０フェムト秒という超短時間でのX線レーザーの照射を用いたSFXにより、酵素反応などに伴う一連の構造変化が起きるフェムト秒〜ピコ秒間の反応過程などの観察が可能になります。また、本研究で開発したグリースによる結晶供給を用いたSFXは、タンパク質結晶のみを研究対象として限定するものではなく、有機、無機物質を問わず幅広い研究分野への応用が期待できます。


＜原論文情報＞
　・Michihiro　Sugahara，Eiichi　Mizohata，Eriko　Nango，Mamoru　Suzuki，Tomoyuki　Tanaka，Tetsuya　Masuda，Rie　Tanaka，Tatsuro　Shimamura，Yoshiki　Tanaka，Chiyo　Suno，Kentaro　Ihara，Dongqing　Pan，Keisuke　Kakinouchi，Shigeru　Sugiyama，Michio　Murata，Tsuyoshi　Inoue，Kensuke　Tono，Changyong　Song，Jaehyun　Park，Takashi　Kameshima，Takaki　Hatsui，Yasumasa　Joti，Makina　Yabashi，So　Iwata，“Grease　matrix　as　a　versatile　carrier　of　proteins　for　serial　crystallography”，Nature　Methods，２０１４，doi：１０．１０３８／nmeth．３１７２．


＜発表者＞
　独立行政法人理化学研究所
　放射光科学総合研究センター　http://www.riken.jp/research/labs/rsc/
　利用システム開発研究部門　http://www.riken.jp/research/labs/rsc/adv_photon/
　生物試料基盤グループ　http://www.riken.jp/research/labs/rsc/adv_photon/bio_spec/
　研究員　菅原　道泰（すがはら　みちひろ）

　国立大学法人大阪大学大学院工学研究科
　助教　溝端　栄一（みぞはた　えいいち）

　国立大学法人京都大学大学院農学研究科
　助教　桝田　哲哉（ますだ　てつや）


　※補足説明／図１・２は添付の関連資料を参照